文献解析 | 11 种肿瘤类型的癌症转变过程中的表观遗传调控
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><span style="color: black;">大众</span>好,今天给<span style="color: black;">大众</span><span style="color: black;">诠释</span>一篇题为Epigenetic regulation during cancer transi tions across 11 tumour types(11种肿瘤类型癌症转移过程中的表观遗传学调控)染色质可及性<span style="color: black;">针对</span>调节基因表达和细胞特性至关<span style="color: black;">要紧</span>,可及性的改变与驱动癌症的<span style="color: black;">出现</span>、进展和转移<span style="color: black;">相关</span>。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;"><span style="color: black;">科研</span>背景</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">染色质可及性在调节基因表达和细胞身份方面至关<span style="color: black;">要紧</span>,可及性的改变与驱动癌症的<span style="color: black;">出现</span>、<span style="color: black;">发展</span>和转移<span style="color: black;">相关</span>1、2、3、4.尽管<span style="color: black;">已然</span><span style="color: black;">科研</span>了遗传对致癌转化的贡献,但表观遗传驱动<span style="color: black;">原因</span>仍然鲜为人知。在<span style="color: black;">这儿</span>,<span style="color: black;">咱们</span><span style="color: black;">运用</span>来自 225 个样本的单核染色质可及性数据(<span style="color: black;">运用</span>转座酶可及染色质的单核测定)和来自 206 个样本的匹配单细胞或单核 RNA 测序表达数据构建了泛癌表观遗传和转录组图谱。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><span style="color: black;">经过</span>富集可触及的染色质区域、转录因子基序和调节子,分析了来自<span style="color: black;">每一个</span>平台的 100 多万个细胞,<span style="color: black;">咱们</span>确定了与癌症转变<span style="color: black;">关联</span>的表观遗传驱动<span style="color: black;">原因</span>。<span style="color: black;">有些</span>表观遗传驱动<span style="color: black;">原因</span>出<span style="color: black;">此刻</span>多种癌症中(例如,ABCC1 和 VEGFA 的调控区域;GATA6 和 FOX 家族基序),而其他基序是癌症特异性的(例如,FGF19、ASAP2 和 EN1 的调节区域以及 PBX3 基序)。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">在表观遗传改变的通路中,TP53、缺氧和 TNF 信号传导与癌症<span style="color: black;">出现</span><span style="color: black;">相关</span>,而雌激素反应、上皮-间充质转化和顶端连接与转移转化<span style="color: black;">相关</span>。<span style="color: black;">另外</span>,<span style="color: black;">咱们</span>揭示了<span style="color: black;">加强</span>子可及性和基因表达之间的显着<span style="color: black;">关联</span>性,并揭示了表观遗传和遗传驱动<span style="color: black;">原因</span>之间的合作。该图谱为进一步<span style="color: black;">科研</span>癌症转化中的表观遗传动力学奠定了<span style="color: black;">基本</span>。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">图一</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">11种癌症类型的染色质可及性模式。</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><img src="//q4.itc.cn/images01/20240315/c577763b3e564b5eb94946fe60389854.jpeg" style="width: 50%; margin-bottom: 20px;"></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">图一</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">a,数据生成和<span style="color: black;">科研</span>设计的示意图,<span style="color: black;">表示</span>收集的癌症类型和样本类型,图谱的构建、注释和整合,以及所<span style="color: black;">科研</span>的生物实体。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">b,整合泛癌 snATAC-seq 对象的均匀流形近似和投影 (UMAP) 图,<span style="color: black;">表示</span>了 250,222 个免疫细胞、69,684 个基质细胞、69,506 个正常上皮细胞和 588,895 个癌细胞在 225 个样本中的分布。扩展数据图中<span style="color: black;">表示</span>了 36 种不同细胞类型的<span style="color: black;">仔细</span>细分。1b 和 2a,b。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">c,来自<span style="color: black;">每一个</span>肿瘤的癌细胞与肿瘤起源组织的正常细胞类型之间的皮尔逊<span style="color: black;">关联</span>系数。细胞类型按<span style="color: black;">增多</span><span style="color: black;">每一个</span>队列的中位<span style="color: black;">关联</span>系数排序;最右边的细胞类型被认为是CNC,随后被用作识别癌症<span style="color: black;">关联</span>表观遗传驱动<span style="color: black;">原因</span>的参考。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">d,<span style="color: black;">经过</span>比较癌细胞与CNCs鉴定的顶级癌细胞<span style="color: black;">关联</span>DACR。气泡<span style="color: black;">体积</span><span style="color: black;">表示</span><span style="color: black;">拥有</span>可<span style="color: black;">拜访</span> DACR 的癌细胞的百分比,颜色<span style="color: black;">暗示</span>对数2.x 轴<span style="color: black;">表示</span><span style="color: black;">每一个</span> DACR 的<span style="color: black;">近期</span>基因。基因按癌症之间共享的基因和癌症类型特有的基因进行分组。<span style="color: black;">按照</span>特异性和每种癌症类型(列)的倍数变化 (FC) 或<span style="color: black;">可否</span>由最大癌症数量共享(共享)来<span style="color: black;">选取</span>癌症特异性 DACR。正日志2<span style="color: black;">倘若</span> ACR 在 >5% 的癌细胞中可及,则<span style="color: black;">表示</span> 。与 EpiMap 数据库中的<span style="color: black;">起步</span>子和<span style="color: black;">加强</span>子重叠的基因的 DACR 以粗体<span style="color: black;">明显</span><span style="color: black;">表示</span>。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">图二</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">CREs调节癌症中的转录程序。</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><img src="//q4.itc.cn/images01/20240315/834e7484cbf2464ea83f74fe5fa6899f.jpeg" style="width: 50%; margin-bottom: 20px;"></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">图二</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">a,<span style="color: black;">按照</span>重叠 EpiMap <span style="color: black;">加强</span>子区域(左)、重叠 EpiMap <span style="color: black;">起步</span>子区域(中)和 RNA 转录本(右)的 ACR 的可及性计算的来自同一组织的癌细胞和正常细胞的样本 Pearson <span style="color: black;">关联</span>性(snMultiome-seq 样本)。左侧热图采用单连杆聚类<span style="color: black;">办法</span>和欧几里得距离聚类,中心和右侧热图遵循相同的<span style="color: black;">次序</span>。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">b,按癌症类型划分的 ACR 与基因链接的计数,并<span style="color: black;">经过</span> ACR 的 EpiMap 注释着色。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">c,UpSet 图<span style="color: black;">表示</span>大<span style="color: black;">都数</span><span style="color: black;">加强</span>子与基因的连接是癌症类型特异性的。右下角的连接点<span style="color: black;">暗示</span>所<span style="color: black;">暗示</span>的癌症类型之间共享的 ACR 到基因链接。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">d,与PDAC癌细胞中基因表达(下图)<span style="color: black;">关联</span>的ACR(上图)的可及性。热图<span style="color: black;">表示</span>了按癌细胞样本和正常胰腺细胞按细胞类型聚合的平均归一化和缩放的 snATAC-seq 和 snRNA-seq 值。<span style="color: black;">运用</span>Ward最小方差法(R的Ward.D2)和欧几里得距离对顶部热图进行聚类。底部的热图列和行遵循顶部热图的<span style="color: black;">次序</span>。Acinar,腺泡细胞;腺泡REG,再生蛋白高表达的腺泡细胞;ADM,腺泡导管化生;dELS,<span style="color: black;">拥有</span><span style="color: black;">加强</span>子样特征的远端顺式调节区 (CRE);导管样-1,<span style="color: black;">拥有</span>高 SPP1 和 CRP 的导管细胞;导管样-2,<span style="color: black;">拥有</span><span style="color: black;">增多</span>粘液基因和三叶因子基因的导管细胞;胰岛,朗格汉斯细胞的所有胰岛;pELS,<span style="color: black;">拥有</span><span style="color: black;">加强</span>子样特征的近端 CRE;PLS,<span style="color: black;">拥有</span>类似发起人签名的 CRE。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">图三</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">泛癌和癌症特异性调节子。</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><img src="//q0.itc.cn/images01/20240315/24491e34f64b44fb8ff1db06b618d14e.jpeg" style="width: 50%; margin-bottom: 20px;"></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">图三</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">a,<span style="color: black;">运用</span> SCENIC 在 sc/snRNA-seq 数据上鉴定的组织和癌细胞特异性调控子(列),其中调控子是 TF 及其 n 个靶基因,基因数量<span style="color: black;">表示</span>在顶部。热图<span style="color: black;">表示</span>了来自每种癌症的 200 个肿瘤和 200 个随机<span style="color: black;">选取</span>的正常细胞(行)的曲线下面积 (AUC) 评分。与CNC相比,癌症特异性调节子在癌细胞中<span style="color: black;">表示</span>出更高的活性。几种癌症中共有的顶级癌细胞特异性调节子以粗体<span style="color: black;">明显</span><span style="color: black;">表示</span>。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">b, 原发癌细胞和相应CNCs的调节子活性评分(上图;n = 2,211 (PDAC)、n = 744(导管样 2)、n = 5,000 (ccRCC)、n = 714(近端肾小管)、n = 446 (CRC)、n = 184(远端干细胞)、n = 3,600 (GBM)、n = 842 (OPC)、n = 389(星形胶质细胞)、n = 800 (SKCM) 和 n = 20(黑色素细胞))和 TF 基序可及性评分(底部;n = 30,428 (PDAC)、n = 1,652(导管样 2)、n = 106,250 (ccRCC)、n = 11,471(近端肾小管)、n = 6,243 (CRC)、n = 860(远端干细胞)、n = 83,507 (GBM)、n = 933 (OPC)、n = 996(星形胶质细胞)、n = 7,844 (SKCM) 和 n = 20(黑色素细胞))。 方框按癌症类型着色,绿色方框<span style="color: black;">表率</span>正常细胞。FDR<span style="color: black;">调节</span>的Wilcoxon双侧P值如图所示(<span style="color: black;">弥补</span>表4c,e)。<span style="color: black;">针对</span>箱形图,中心线<span style="color: black;">表示</span>中位数,箱形极限<span style="color: black;">表示</span><span style="color: black;">第1</span>和第三个四分位数,上下胡须从铰链延伸到最大值或最小值不超过 1.5×距铰链的四分位距 (IQR)。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">c,其中靶基因富集 TF 特异性 ACR 到基因链接的 TF(ACR <span style="color: black;">包括</span>该 TF 结合位点)。颜色<span style="color: black;">暗示</span>日志2 观察到的<span style="color: black;">拥有</span>此类链接的靶基因数量超过预期数量(K1, ..., n)的随机基因。<span style="color: black;">按照</span>高斯 z 评分计算<span style="color: black;">每一个</span>调节子的单侧 P 值,z = (M − μ)/σ,其中 M 是观察到的与 TF 基序<span style="color: black;">关联</span>的靶基因数量。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">d,在随机采样的基因中<span style="color: black;">发掘</span>的<span style="color: black;">拥有</span> PPARG 特异性 PDAC ACR 与基因链接的基因数量的正态分布示例。观察到的<span style="color: black;">拥有</span> PPARG 特异性 ACR 与基因链接的 PPARG 靶基因数量由红线<span style="color: black;">暗示</span>。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">e, 靶基因TSS<span style="color: black;">周边</span>存在ChIP-seq峰(ENCODE)、snATAC-seq峰或CUT&RUN峰。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">图四</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">癌症转移中激活的表观遗传程序。</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><img src="//q3.itc.cn/images01/20240315/00e6e3f98fc84f65bcfc7634cb17edac.jpeg" style="width: 50%; margin-bottom: 20px;"></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">图四</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">a,在四种癌症类型中,转移和原发样本之间<span style="color: black;">拥有</span>不同基序可及性的TFs。y 轴<span style="color: black;">表示</span><span style="color: black;">运用</span>双侧 Wilcoxon 秩和检验计算的 FDR 校正 P 值。表达式分数对应于日志的绝对值2转移细胞和原发癌细胞之间 TF 表达中的 ,<span style="color: black;">运用</span><span style="color: black;">每一个</span>样本的平均值,并且<span style="color: black;">必须</span>与同一 TF-癌症对的基序评分差异相同的倍数变化方向。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">b,PDAC小鼠模型中GATA6(红色)表达的mpIHC分析。CK19(绿色)标记癌细胞,DAPI(蓝色)标记细胞核。比例尺,100 μm(主图像)和 50 μm(插图)。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">c、GATA6 和 GATA6+高与匹配的转移性 (met.) 相比,原发性 PDAC 的癌细胞百分比更高。PDAC的。n = 6。图中<span style="color: black;">表示</span>了<span style="color: black;">运用</span>双侧配对 t 检验计算的 P 值。<span style="color: black;">针对</span>箱形图,中心线<span style="color: black;">表示</span>中位数,箱形极限<span style="color: black;">表示</span><span style="color: black;">第1</span>和第三个四分位数,上下胡须从铰链延伸到距铰链不超过 1.5 × IQR 的最大值或最小值。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">d,转移性肿瘤与原发性肿瘤中上调的 DACR 的显着和提示性 (FDR ≤ 20%) 标志通路富集。气泡的<span style="color: black;">体积</span>和颜色传达了基因计数和对数10[罗斯福]。分析中<span style="color: black;">运用</span>的每种癌症类型的DACR总数以对数上限为5,0002[足球俱乐部](顶部)。<span style="color: black;">每一个</span>通路中注释的 DACR 总数如右图所示。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">e,f,结直肠癌病例(e)和UCEC病例(f)的成对原发性和转移性样本的UMAP图(左)。小热图<span style="color: black;">表示</span>了基于<span style="color: black;">每一个</span>样本中<span style="color: black;">每一个</span>簇平均的 TF 基序分数的 Pearson <span style="color: black;">关联</span>系数。散点图<span style="color: black;">表示</span>了沿着 Slingshot 识别的轨迹排序的细胞(中),散点图<span style="color: black;">表示</span>了 PBX3 (e) 或 SNAI1 (f) 基序可及性与伪时间<span style="color: black;">发展</span>之间的<span style="color: black;">相关</span>(右)。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">见图五</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;">遗传驱动<span style="color: black;">原因</span>对染色质可及性的影响。</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><img src="//q0.itc.cn/images01/20240315/14bf2ca928b54537a17f007f11413819.jpeg" style="width: 50%; margin-bottom: 20px;"></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">图五</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">a,从snATAC-seq数据和WES数据中检测到五种癌症类型的TERTp突变(C228T和C250T)。图中<span style="color: black;">表示</span>了批量 WES 数据(上图)和 snATAC-seq 数据(下图)中支持参考或突变等位基因的读取计数。分别对癌细胞和正常细胞的 snATAC-seq 支持的读长进行计数,<span style="color: black;">而后</span>归一化为每组中的细胞总数。底部的热图<span style="color: black;">表示</span>了<span style="color: black;">每一个</span>样本在癌症和正常细胞中的TERT表达。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">b,<span style="color: black;">运用</span> snMultiome-seq 数据鉴定的已知癌基因的表观遗传调控。<span style="color: black;">每一个</span>点<span style="color: black;">表示</span>一个<span style="color: black;">加强</span>子到基因链接 z 分数。<span style="color: black;">加强</span>子到基因 z 分数是<span style="color: black;">经过</span>平均所有 ACR 落入一个<span style="color: black;">加强</span>子的 ACR 到基因链接 z 分数来计算的,如 EpiMap 或 GeneHancer 数据库中所述。点颜色对应于鉴定出 ACR 与基因链接的癌症类型,点<span style="color: black;">体积</span>对应于 x 轴上<span style="color: black;">表示</span>的基因的归一化 RNA 表达。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">c, BRCA基底癌、CESC、HNSCC癌细胞和CRC癌细胞中EGFR区域的覆盖图。仅纳入中性EGFR CNV的样本。EGFR型RNA表达如右图所示。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">d,Kaplan-Meier图和按PITX3调控子活性分层的TCGA-GBM队列(上图)和按KLF6调控子活性分层的TCGA-PDAC队列(下图)的<span style="color: black;">没</span><span style="color: black;">发展</span><span style="color: black;">存活</span>期分析。误差带<span style="color: black;">暗示</span> 95% 置信区间。<span style="color: black;">暗示</span><span style="color: black;">运用</span>对数秩 (Mantel-Cox) 检验计算的双侧 P 值。高调节活性组和低调节活性组分别<span style="color: black;">按照</span>高于和<span style="color: black;">小于</span>中位数的值进行定义。为<span style="color: black;">每一个</span><span style="color: black;">病人</span>亚组指定 n。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;">e,本<span style="color: black;">科研</span>的HPV阳性和HPV阴性HNSCC样本(上)和TCGA-HNSCC(下)中KLF4的调节活性。图中<span style="color: black;">表示</span>了<span style="color: black;">运用</span>双侧 Wilcoxon 秩和检验计算的 P 值。</p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><strong style="color: blue;"><span style="color: black;">科研</span>结果</strong></p>
<p style="font-size: 16px; color: black; line-height: 40px; text-align: left; margin-bottom: 15px;"><span style="color: black;">认识</span>肿瘤染色质结构的景观、<span style="color: black;">重要</span>癌症转变时的染色质可及性变化以及染色质可及性、遗传改变和转录模式之间的相互<span style="color: black;">功效</span><span style="color: black;">针对</span>推进癌症生物学和临床实践至关<span style="color: black;">要紧</span>。染色质可及性的某些变化<span style="color: black;">表率</span>了癌症<span style="color: black;">出现</span>和转移扩散的<span style="color: black;">重要</span>事件/驱动<span style="color: black;">原因</span>,可能是潜在的治疗靶点。尽管TF本身很难用传统疗法靶向,<span style="color: black;">况且</span>它们在正常组织中的多种<span style="color: black;">功效</span><span style="color: black;">导致</span>了对脱靶效应的担忧,但<span style="color: black;">咱们</span><span style="color: black;">经过</span>关注广泛的转录程序来强调潜在的靶向元素。最后,<span style="color: black;">咱们</span>预计该图谱将<span style="color: black;">作为</span><span style="color: black;">将来</span>癌症<span style="color: black;">科研</span>的宝贵资源。<a style="color: black;"><span style="color: black;">返回首页,查看<span style="color: black;">更加多</span></span></a></p>
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